GASTRITIS.
CAUSAS.
En resumen, podríamos decir que la gastritis
se debe:
- Al consumo excesivo de grasas.
- A la ingesta descontrolada de cafeína.
- A la nicotina ingerida debido al fumar.
- A intoxicaciones de origen alimenticio.
- A la abundancia en el consumo de alcohol.
- A un ritmo de vida que provoca estrés diario.
- A la costumbre de realizar comidas muy copiosas.
- A la ingesta exagerada de alimentos muy
condimentados.
- A la infección causada por la bacteria
Helycobapter Pylori.
- Al consumo sin medida de aspirinas y otros
medicamentos.
- Al uso prolongado de ciertos medicamentos como antiinflamatorios, antirreumáticos, etc.
SINTOMATOLOGIA.
A continuación se enumeran los síntomas más
comunes de la gastritis. Sin embargo, cada individuo puede
experimentarlos de una forma diferente. Los síntomas pueden incluir:
- Malestar o dolor de estómago.
- Eructos.
- Hemorragia abdominal.
- Náuseas.
- Vómitos.
- Sensación de estar lleno o de ardor en el
estómago.
- Sangre en el vómito o en las heces (una señal
de que el revestimiento del estómago puede estar sangrando).
- Los síntomas de la gastritis pueden parecerse
a los de otras condiciones o problemas médicos. Siempre consulte a su médico para el diagnóstico.
PATOLOGIA.
-Pliegues
hipertróficos
-Pliegues
atróficos
La clasificación de gastritis:
-gastritis aguda
La clasificación de gastritis:
-gastritis aguda
-gastritis
crónicas
-gastritis
infecciosa (helicobacter pylori y otras)
-gastritis
eosinofilas
-gastritis
inducidas por fármacos y antiinflamatorios esteroideos
AINES
-gastritis
granulomotora
-gastritis por
estress
-gastritis
inducidas por sustancias caústicas
-gastritis
alcohólica
-Gastritis
por lesiones neurológicas.
DIAGNOSTICO.
El
diagnóstico de la gastritis si es leve, se hace en el consultorio, mediante un
examen físico y la integración de la historia clínica.
En casos necesarios el
médico solicita una gastroscopia, para revisar por medio de un
instrumento de fibra óptica las condiciones de las paredes internas estomacales
y tomar una muestra del tejido para realizar una biopsia, con el objeto de
descartar males mayores como el cáncer estomacal o de detectar la presencia de
la bacteria H. Pilory.
Otras formas de diagnóstico
pueden ser por medio de radiografías del tracto gastrointestinal superior o por
medio de la toma de muestras de líquidos del estómago, para analizar el grado
de acidez padecido.
TRATAMIENTO.
La gastritis tipo B se trata solo cuando se
presenta infección sintomática. Se usa claritromicina,
amoxicilina
y tetraciclina.
Anteriormente se utilizaba metronidazol, pero ahora se sabe que se
presenta resistencia en más del 80% de los casos. Los tratamientos de gastritis
suelen ser antiácidos (Almax, Urbal) o reguladores de la acidez gástrica
(ranitidina)
o que disminuyan la secreción gástrica (omeprazol)
y sobre todo una dieta adecuada: las bebidas gaseosas retrasan la digestión,
por lo que aumentan la secreción de ácidos en el estómago. Una dieta para el
estómago delicado se suele llamar dieta blanda.
TRATAMIENTO
NATURAL.
- El aloe vera es muy efectivo en el tratamiento de trastornos digestivos en general. Para aliviar los ardores y acidez de estómago podemos ingerir cada día en ayunas jugo de aloe vera. Este tratamiento actúa como tónico general y regulador intestinal. Debemos tener en cuenta que el aloe tiene efecto laxante suave.
- Se usa la asociación de regaliz y arcilla como tratamiento en la gastritis debido a sus propiedades
- El regaliz por su acción antiespasmódica es eficaz en el tratamiento de úlceras gástricas, gastralgias y ardores de estómago. A su vez posee propiedades antiinflamatorias y antiulcerosas, aumenta la secreción del moco gástrico y disminuye la del pepsinógeno, protegiendo la mucosa gástrica.
- La arcilla se usa debido a su gran poder cicatrizante a nivel de estómago y su capacidad, al poder de contrarrestar y neutralizar el efecto del ácido clorhídrico. Asimismo posee gran capacidad de absorción, capta, neutraliza y elimina tanto sustancias no utilizadas de los alimentos como aquellas otras de carácter tóxico; es, además, un potente agente estimulador, limpia y enriquece la sangre, estimula el órgano deficiente y contribuye al restablecimiento de la función que falla.
INFORMACION DE LA BACTERIA HELYCOBACTER PYLORI.
TOMA DE MUESTRA .
Existen
diferentes métodos para diagnosticar una infección de H. pylori. Uno es detectando anticuerposespecíficos en una muestra de sangre
del paciente o de heces, utilizando antígenos. También se utiliza laprueba del aliento con urea, en la cual el paciente bebe urea
marcada con 14C o 13C, produciéndose posteriormente
(debido al metabolismo de la bacteria) dióxido de carbono marcado, el cual es detectado en la
respiración. Otro método de diagnóstico es la biopsia, en la cual se mide la ureasa activa en la muestra extraída (el
denominado "test rápido de la ureasa"). Otra forma de diagnosticar
una infección de H. pylori es por medio de una muestra histológica o de un cultivo celular. Uno de los métodos de detección más
sensibles corresponde a la PCR (reacción en cadena de la polimerasa), la cual permite también
identificar genes asociados a virulencia (CagA y VacA), genes asociados a
adhesión (BabA) y genes de resistencia a antibióticos (Claritromicina).
TINCION
DE BAAR.
La tinción de Ziehl-Neelsen
(BAAR) es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, para la
identificación de microorganismos patógenos, por ejemplo M. tuberculosis.
Fue descrita por primera vez por dos médicos alemanes, Franz Ziehl (1859 a 1926), un bacteriólogo y Friedrich Neelsen (1854 to 1894), un patólogo.
Fundamento
Las paredes celulares de ciertos parásitos y bacterias. contienen ácidos grasos (ácidos micólicos) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan ácido-alcohol resistentes. Las micro bacterias como M. tuberculosis y M. marinum y los parásitos coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras. Al suspender el calentamiento y enfriar con agua, provoca una nueva solidificación de lo ácidos grasos de modo que el colorante ya no puede salir de las bacterias. Por otro lado, el calentamiento aumenta la energía cinética de las moléculas del colorante lo cual también facilita su entrada a las bacterias. Las bacterias que resisten la decoloración son de color rojo y la que no se ven de color azul.(slideshare.net)
Procedimiento.
Reactivos:
1. fucsina-fenicada.
2. alcohol-ácido
3. azul de metileno
Variante clásica o "en caliente"
1. Hacer un frontis de la muestra de esputo.
1. La fijación al calor asegurará de que el frontis quede adherido al portaobjetos. Un frontis muy delgado puede darle resultados falsamente negativos y un frontis muy grueso puede desprenderse del portaobjetos durante la tinción.
2. Utilizando pinzas, coloque los portaobjetos en una gradilla de tinción con los extendidos hacia arriba. Coloque todos los portaobjetos orientados uniformemente, con el frontis hacia arriba.
Fue descrita por primera vez por dos médicos alemanes, Franz Ziehl (1859 a 1926), un bacteriólogo y Friedrich Neelsen (1854 to 1894), un patólogo.
Fundamento
Las paredes celulares de ciertos parásitos y bacterias. contienen ácidos grasos (ácidos micólicos) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan ácido-alcohol resistentes. Las micro bacterias como M. tuberculosis y M. marinum y los parásitos coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras. Al suspender el calentamiento y enfriar con agua, provoca una nueva solidificación de lo ácidos grasos de modo que el colorante ya no puede salir de las bacterias. Por otro lado, el calentamiento aumenta la energía cinética de las moléculas del colorante lo cual también facilita su entrada a las bacterias. Las bacterias que resisten la decoloración son de color rojo y la que no se ven de color azul.(slideshare.net)
Procedimiento.
Reactivos:
1. fucsina-fenicada.
2. alcohol-ácido
3. azul de metileno
Variante clásica o "en caliente"
1. Hacer un frontis de la muestra de esputo.
1. La fijación al calor asegurará de que el frontis quede adherido al portaobjetos. Un frontis muy delgado puede darle resultados falsamente negativos y un frontis muy grueso puede desprenderse del portaobjetos durante la tinción.
2. Utilizando pinzas, coloque los portaobjetos en una gradilla de tinción con los extendidos hacia arriba. Coloque todos los portaobjetos orientados uniformemente, con el frontis hacia arriba.
CULTIVO.
Helicobacter pylori es un microorganismo capaz de
crecer en distintos medios de cultivo si bien requiere diferentes factores de
crecimiento. Los medios de cultivo sólidos más frecuentes son Agar
Mueller-Hinton y Agar Columbia y los suplementos más comúnmente empleados son
la sangre o derivados de ella. Es difícil de cultivar en medio líquido aunque
se logra con menor dificultad a partir de caldo de Brucella, infusión cerebro-corazón,
Mueller-Hinton y tripticasa soja, todos ellos suplementados con nutrientes
(Mégraud 1997).
Para el aislamiento primario, con el objetivo de
evitar el sobrecrecimiento de contaminantes que pueden acompañar a H. pylori en
la biopsia es necesaria la utilización de inhibidores que no afecten su
viabilidad. Es recomendable añadir mezclas de antibióticos como el suplemento
de Dent, que contiene vancomicina, trimetoprim, cefsoludina y anfotericina B.
H. pylori es un
microorganismo microaerofílico que requiere para su crecimiento una atmósfera
con las siguientes características: 5-10% de O2, 5-10% de CO2 y 80-90% de
N2 a 35-37ºC, una humedad del 90-95% y una incubación
de hasta 10 días antes de considerar negativo el cultivo.
PRUEBAS BIOQUIMICAS.
La actividad de oxidasa, ureasa y catalasa está presente en Helicobacter pylori, enzimas muy útiles
para su identificación.
Aunque H. pylori es muy homogéneo en cuanto a sus
características bioquímicas, presenta una importantísima variabilidad
antigénica. Esto es debido a que existen
muchos genes que codifican proteínas de membrana y
además entre ellas pueden darse distintos procesos de recombinación.
OXIDASA POSITIVA.
UREASA POSITIVA: la prueba de la ureasa permite
detectar la presencia de la descomposición de la urea en anhídrido carbónico y
amoniaco, que se demuestra
mediante un cambio de color en el medio que contiene
un indicador de pH. La prueba de la ureasa rápida se puede realizar
directamente con la muestra de
biopsia gástrica. Existen diferentes reactivos
comerciales que contienen urea a diferentes concentraciones y un indicador de
pH. Los resultados de sensibilidad y
especificidad son en general superiores al 80% y 90%.
La seguridad diagnóstica de la prueba dependerá de la localización de la
biopsia utilizada, de la carga
bacteriana y del tratamiento previo con antibióticos o
con inhibidores de la bomba de protones.
CATALASA POSITIVA: Es una de las enzimas producidas
por la bacteria que desempeña una función importante como factor de virulencia,
favorece la sobrevivencia de la bacteria en el tejido inflamado, la protege de
las acciones fagocíticas de los neutrófilos, de los metabolitos reactivos de oxígeno
(MRO) y la de otros mediadores químicos de la inflamación.
•Oxidasa+
•Ureasa+
•Catalasa+
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